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R 中的数据挖掘算法/序列挖掘/DEGSeq

来自维基教科书,开放世界中的开放书籍

使用 DEGseq

首先,我们必须选择组织数据的方式。有两种方法可以做到这一点:使用基于 MA 图的随机抽样模型方法或使用基于 MA 图的技术重复方法。

基于 MA 图的随机抽样模型方法

MA 图是一种统计分析工具,已用于检测和可视化微阵列数据的强度依赖比率。设 C1 和 C2 表示从两个样本获得的映射到特定基因的读取次数,其中 Ci ~ 二项式(ni, pi),I = 1,2,其中 ni 表示映射读取的总数,pi 表示读取来自该基因的概率。我们定义 M = log2C1 - log2C2,以及 A = (log2C1 + log2C2)/2。可以证明,在随机抽样假设下,给定 A = a(a 是 A 的观测值)的 M 的条件分布遵循近似正态分布。对于 MA 图上的每个基因,我们对 H0: p1 = p2 与 H1: p1 ≠ p2 进行假设检验。然后,可以基于条件正态分布分配一个 P 值。

基于 MA 图的技术重复方法

尽管据报道测序平台具有低背景噪声,但技术重复仍然可以提供信息,用于质量控制和估计由于不同机器或平台造成的变异。基于 MA 图的另一种方法通过比较数据中的技术重复(如果可用)来估计噪声水平。在这种方法中,首先在两个技术重复的 MA 图上沿 A 轴应用滑动窗口,以估计对应于不同表达水平的随机变异。通过局部回归对强度依赖噪声水平进行平滑估计,并在正态分布假设下转换为以 A 为条件的 M 的局部标准差。然后,局部标准差用于识别两个样本之间基因表达的差异。

多重检验校正

对于上述方法,针对每个基因计算的 P 值会调整为 Q 值,以进行多重检验校正。用户可以设置 P 值或错误发现率 (FDR) 阈值来识别差异表达基因。

选择数据后,您可以应用 R 包 DEGseq。有五种不同的方法来运行该程序。它们是 DEGexp、DEGseq、readGeneExp、samWrapper 和 getGeneExp。

包的功能

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描述

当用户已经拥有基因表达值(例如映射到每个基因的读取次数)时,此函数用于识别差异表达基因。

用法

DEGexp( geneExpFile1, geneCol1=1, expCol1=2, depth1=rep(0, length(expCol1) ), groupLabel1=" geneExpFile2, geneCol2=1, expCol2=2, depth2=rep(0, length(expCol2) ), groupLabel2=" header=TRUE, sep="", method=c("LRT", "CTR", "FET", "MARS", "MATR", "FC"), pValue=1e-3, zScore=4, qValue=1e-3, foldChange=4, thresholdKind=1, outputDir="none", normalMethod=c("none", "loess", "median"), replicate1="none", geneColR1=1, expColR1=2, depthR1=rep(0, length(expColR1) ), replicate2="none", geneColR2=1, expColR2=2, depthR2=rep(0, length(expColR2) ), rawcount=TRUE )

参数

参数 描述
geneExpFile1 包含样本 1(或 method="CTR" 时的重复 1)重复的基因表达值的文件。
geneCol1 geneExpFile1 中的基因 ID 列。
expCol1 geneExpFile1 中样本 1(数值向量)重复的表达值列。注意:每列对应于样本 1 的一个重复。
depth1 样本 1(数值向量)每个重复的唯一映射到基因组的读取总数,默认值:将映射到所有注释基因的读取总数作为每个重复的深度。
groupLabel1 图中组 1 的标签。
GeneExpFile2 包含样本 2(或 method="CTR" 时的重复 2)重复的基因表达值的文件。
geneCol2 geneExpFile2 中的基因 ID 列。
expCol2 geneExpFile2 中样本 2(数值向量)重复的表达值列。注意:每列对应于样本 2 的一个重复。
depth2 样本 2(数值向量)每个重复的唯一映射到基因组的读取总数,默认值:将映射到所有注释基因的读取总数作为每个重复的深度。
groupLabel2 图中组 2 的标签。
header 一个逻辑值,指示 geneExpFile1 和 geneExpFile2 是否包含变量名称作为第一行。
sep 字段分隔符字符。如果 sep = ""(read.table 的默认值),则分隔符为空格,即一个或多个空格、制表符、换行符或回车符。
method 识别差异表达基因的方法。可能的方法包括:• "LRT":似然比检验 (Marioni 等人,2008),• "CTR":检查技术重复之间的变异是否可以用随机抽样模型 (Wang 等人,2009) 解释,• "FET":Fisher 精确检验 (Joshua 等人,2009),• "MARS":基于 MA 图的随机抽样模型方法 (Wang 等人,2009),• "MATR":基于 MA 图的技术重复方法 (Wang 等人,2009),• "FC":MA 图上的倍数变化阈值。
pValue p 值阈值(对于方法:LRT、FET、MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=1 时使用。
zScore z 分数阈值(对于方法:MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=2 时使用。
qValue q 值阈值(对于方法:LRT、FET、MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=3 或 thresholdKind=4 时使用。
thresholdKind 阈值类型。可能的类型包括:• 1:p 值阈值,• 2:z 分数阈值,• 3:q 值阈值 (Benjamini 等人,1995),• 4:q 值阈值 (Storey 等人,2003)。
foldChange MA 图上的倍数变化阈值(对于方法:FC)。
outputDir 输出目录。
normalMethod 归一化方法:"none"、"loess"、"median"。建议:"none"。
replicate1 包含重复批次 1(仅在 method="MATR" 时使用)的基因表达值的文件。注意:重复 1 和重复 2 是样本的两个(组)技术重复。
GeneColR1 重复批次 1(仅在 method="MATR" 时使用)的表达文件中的基因 ID 列。
expColR1 重复批次 1(数值向量)(仅在 method="MATR" 时使用)的表达文件中的表达值列。
depthR1 重复批次 1(数值向量)中每个重复的唯一映射到基因组的读取总数,默认值:将映射到所有注释基因的读取总数作为每个重复的深度(仅在 method="MATR" 时使用)。
ReplicateLabel1 图中重复批次 1 的标签(仅在 method="MATR" 时使用)。
replicate2 包含重复批次 2(仅在 method="MATR" 时使用)的基因表达值的文件。注意:重复 1 和重复 2 是样本的两个(组)技术重复。
geneColR2 重复批次 2(仅在 method="MATR" 时使用)的表达文件中的基因 ID 列。
expColR2 重复批次 2(数值向量)(仅在 method="MATR" 时使用)的表达文件中的表达值列。
depthR2 重复批次 2(数值向量)中每个重复的唯一映射到基因组的读取总数,默认值:将映射到所有注释基因的读取总数作为每个重复的深度(仅在 method="MATR" 时使用)。
ReplicateLabel2 图中重复批次 2 的标签(仅在 method="MATR" 时使用)。
rawCount 一个逻辑值,指示基因表达值是基于原始读取计数还是归一化值。

示例

> library(DEGseq)
> geneExpFile <- system.file("data", "GeneExpExample5000.txt",
+ package = "DEGseq")
> if (geneExpFile == "") {
+ zipFile <- system.file("data", "Rdata.zip", package = "DEGseq")
+ if (zipFile != "") {
+ unzip(zipFile, "GeneExpExample5000.txt", exdir = tempdir())
+ geneExpFile <- file.path(tempdir(), "GeneExpExample5000.txt")
+ }
+ }
> layout(matrix(c(1, 2, 3, 4, 5, 6), 3, 2, byrow = TRUE))
> par(mar = c(2, 2, 2, 2))
> DEGexp(geneExpFile1 = geneExpFile, expCol1 = c(7, 9, 12, 15, 18), groupLabel1 = "kidney", geneExpFile2 = geneExpFile, expCol2 = c(8, 10, 11, 13, 16), groupLabel2 = "liver", method = "MARS")


Please wait...


geneExpFile1: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/GeneExpExample5000.txt
gene id column in geneExpFile1: 1
expression value column(s) in geneExpFile1: 7 9 12 15 18
total number of reads uniquely mapped to genome obtained from sample1: 345504 354981 334557 

geneExpFile2: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/GeneExpExample5000.txt
gene id column in geneExpFile2: 1
expression value column(s) in geneExpFile2: 8 10 11 13 16
total number of reads uniquely mapped to genome obtained from sample2: 274430 274486 264999

method to identify differentially expressed genes: MARS
pValue threshold: 0.001
output directory: none
The outputDir is not specified!

Please wait …
Identifying differentially expressed genes ...
Please wait patiently ...
output …
The results can be observed in directory: none

来自 Wang 等人 (2009)

描述

此函数用于识别来自 RNA 测序数据的差异表达基因。它将来自 RNA 测序数据的两个样本的唯一映射读取与基因注释作为输入。因此,用户应提前将读取(从样本的测序文库获得)映射到相应的基因组。

用法

DEGseq ( mapResultBatch1, mapResultBatch2, fileFormat="bed", readLength=32, strandInfo=FALSE, refFlat, groupLabel1="group1", groupLabel2="group2", method=c("LRT", "CTR", "FET", "MARS", "MATR", "FC"), pValue=1e-3, zScore=4, qValue=1e-3, foldChange=4, thresholdKind=1, outputDir="none", normalMethod=c("none", "loess", "median"), depthKind=1, replicate1="none", replicate2="none", replicateLabel1="replicate1", replicateLabel2="replicate2" )

参数

参数 描述
mapResultBatch1 样本 1(或 method="CTR" 时的重复 1)技术重复的唯一映射结果文件。
MapResultBatch2 样本 2(或 method="CTR" 时的重复 2)技术重复的唯一映射结果文件。
fileFormat 文件格式:"bed" 或 "eland"。 "bed" 格式示例:chr12 7 38 readID 2 "eland" 格式示例:readID chr12.fa 7 U2 F 注意:字段分隔符字符为 TAB。并且文件必须遵循其中一个示例的格式。
ReadLength 读取的长度(仅在 fileFormat="eland" 时使用)。strandInfo 在 cDNA 克隆过程中是否保留了链信息。 "TRUE":保留,"FALSE":未保留。
RefFlat UCSC refFlat 格式的基因注释文件。
GroupLabel1 图中组 1 的标签。
GroupLabel2 图中组 2 的标签。
Method 识别差异表达基因的方法。可能的方法包括: "LRT":似然比检验,"CTR":检查两个技术重复之间的变异是否可以用随机抽样模型解释,"FET":Fisher 精确检验,"MARS":基于 MA 图的随机抽样模型方法,"MATR":基于 MA 图的技术重复方法,"FC":MA 图上的倍数变化阈值。
pValue p 值阈值(对于方法:LRT、FET、MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=1 时使用。
zScore z 分数阈值(对于方法:MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=2 时使用。
qValue q 值阈值(对于方法:LRT、FET、MARS、MATR)。仅在 thresholdKind=3 或 thresholdKind=4 时使用。
ThresholdKind 阈值类型。可能的类型包括:• 1:p 值阈值,• 2:z 分数阈值,• 3:q 值阈值,• 4:q 值阈值。
foldChange MA 图上的倍数变化阈值(对于方法:FC)。
outputDir 输出目录。
normalMethod 归一化方法:"none"、"loess"、"median"。建议:"none"。
DepthKind 1- 以每个复制样本中唯一比对到基因组的总读取数作为深度,0: 以每个复制样本中唯一比对到所有注释基因的总读取数作为深度。 我们建议使用 depthKind=1,尤其是在注释文件中的基因是所有基因的一部分时。
replicate1 包含来自复制批次 1 的唯一比对读取的文件(仅在 method="MATR" 时使用)。
replicate2 包含来自复制批次 2 的唯一比对读取的文件(仅在 method="MATR" 时使用)。
ReplicateLabel1 图中重复批次 1 的标签(仅在 method="MATR" 时使用)。
ReplicateLabel2 图中重复批次 2 的标签(仅在 method="MATR" 时使用)。

示例

> kidneyR1L1 <- system.file("data", "kidneyChr21.bed.txt", package = "DEGseq") > liverR1L2 <- system.file("data", "liverChr21.bed.txt", package = "DEGseq") > refFlat <- system.file("data", "refFlatChr21.txt", package = "DEGseq") > mapResultBatch1 <- c(kidneyR1L1) > mapResultBatch2 <- c(liverR1L2) > outputDir <- file.path(tempdir(), "DEGseqExample") > DEGseq(mapResultBatch1, mapResultBatch2, fileFormat = "bed",refFlat = refFlat, outputDir = outputDir, method = "LRT")

请稍候...

mapResultBatch1: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/kidneyChr21.bed.txt mapResultBatch2: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/liverChr21.bed.txt 文件格式: bed refFlat: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/refFlatChr21.txt 在计算比对到基因的读取数时,忽略链信息! 正在计算比对到每个基因的读取数 ... 这将需要几分钟,请耐心等待!

请稍候...

样本文件: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/kidneyChr21.bed.txt 正在计算比对到每个基因的读取数。这将需要几分钟。

请稍候 …

总共 259 个独特基因已处理 0 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 10000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 20000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 30000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 34304 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 总共耗时 0.328000 秒!

请稍候...

样本文件: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/liverChr21.bed.txt 正在计算比对到每个基因的读取数。这将需要几分钟。

请稍候 …

总共 259 个独特基因已处理 0 个读取 (liverChr21.bed.txt) 已处理 10000 个读取 (liverChr21.bed.txt) 已处理 20000 个读取 (liverChr21.bed.txt) 已处理 30000 个读取 (liverChr21.bed.txt) 已处理 30729 个读取 (liverChr21.bed.txt) 总共耗时 0.297000 秒!

请稍候...

geneExpFile1: C:\DOCUME~1\wanglk\LOCALS~1\Temp\RtmpUvf7Fw/DEGseqExample/group1.exp geneExpFile1 中的基因 ID 列: 1 geneExpFile1 中的表达值列: 2 从样本 1 获取的唯一比对到基因组的总读取数: 34304 geneExpFile2: C:\DOCUME~1\wanglk\LOCALS~1\Temp\RtmpUvf7Fw/DEGseqExample/group2.exp geneExpFile2 中的基因 ID 列: 1 geneExpFile2 中的表达值列: 2 从样本 2 获取的唯一比对到基因组的总读取数: 30729 用于识别差异表达基因的方法: LRT p 值阈值: 0.001 输出目录: C:\DOCUME~1\wanglk\LOCALS~1\Temp\RtmpUvf7Fw/DEGseqExample

请稍候 …

正在识别差异表达基因 ... 请耐心等待 ... 输出 ...

已完成 ... 结果可在以下目录中查看: C:\DOCUME~1\wanglk\LOCALS~1\Temp\RtmpUvf7Fw/DEGs

getGeneExp

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描述

此函数用于计算每个基因的读取数并计算 RPKM。它以来自样本的 RNA-seq 数据的唯一比对读取以及基因注释文件作为输入。因此,用户应提前将读取 (从样本的测序文库获得) 比对到相应的基因组。

用法

getGeneExp( mapResultBatch, fileFormat="bed", readLength=32, strandInfo=FALSE, refFlat, output=paste(mapResultBatch[1],".exp",sep=""), min.overlapPercent= 1 )

参数

参数 描述
mapResultBatch 包含样本的唯一比对结果文件的向量。注意: 样本可以具有多个技术重复。
fileFormat 文件格式:"bed" 或 "eland"。 "bed" 格式示例:chr12 7 38 readID 2 "eland" 格式示例:readID chr12.fa 7 U2 F 注意:字段分隔符字符为 TAB。并且文件必须遵循其中一个示例的格式。
readLength 读取的长度 (仅在 fileFormat="eland" 时使用)。 strandInfo 链信息在 cDNA 克隆过程中是否保留。 • "TRUE" : 保留, • "FALSE": 未保留。
refFlat UCSC refFlat 格式的基因注释文件。
output 输出文件。
min.overlapPercent 读取与外显子重叠长度与读取自身长度的最小百分比,用于计算外显子的读取数。应 <=1。0: 读取与外显子之间至少重叠 1 个碱基。

示例

> kidneyR1L1 <- system.file("data", "kidneyChr21.bed.txt", package = "DEGseq") > refFlat <- system.file("data", "refFlatChr21.txt", package = "DEGseq") > mapResultBatch <- c(kidneyR1L1) > output <- file.path(tempdir(), "kidneyChr21.bed.exp") > getGeneExp(mapResultBatch, refFlat = refFlat, output = output) 请稍候... 样本文件: D:/myrpackage/DEGseq.Rcheck/DEGseq/data/kidneyChr21.bed.txt 正在计算比对到每个基因的读取数。这将需要几分钟。请稍候 ... 总共 259 个独特基因已处理 0 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 10000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 20000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 30000 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 已处理 34304 个读取 (kidneyChr21.bed.txt) 总共耗时 0.328000 秒! > exp <- readGeneExp(file = output, geneCol = 1, valCol = c(2, + 3), label = c("raw count", "RPKM")) > exp[30:32, ] raw count RPKM C21orf131 0 0.000 C21orf15 0 0.000 C21orf2 51 665.789

readGeneExp

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描述

此方法用于将基因表达值从文件读取到 R 工作空间中的矩阵。以便矩阵可以用作其他软件包的输入,例如 edgeR。该方法的输入是一个包含基因表达值的文件。

用法

readGeneExp(file, geneCol=1, valCol=2, label = NULL, header=TRUE, sep="")

参数

参数描述 file 包含基因表达值的文件。 GeneCol 文件中的基因 ID 列。 valCol 文件中要读取的表达值列。 label 列的标签。 Header 一个逻辑值,指示文件是否将其第一行作为变量名称。 sep 字段分隔符字符。如果 sep = "" (read.table 的默认值),则分隔符是空白,即一个或多个空格、制表符、换行符或回车符。

示例

> geneExpFile <- system.file("data", "GeneExpExample1000.txt", + package = "DEGseq") > exp <- readGeneExp(file = geneExpFile, geneCol = 1, valCol = c(7, + 9, 12, 15, 18, 8, 10, 11, 13, 16)) > exp[30:32, ]

  R1L1Kidney

R1L3Kidney

R1L7Kidney

R2L2Kidney

R2L6Kidney ENSG00000188976 73 77 68 70 82 ENSG00000187961 15 15 13 12 15 ENSG00000187583 1 1 3 0 3

  R1L2Liver

R1L4Liver

R1L6Liver

R1L8Liver 

R2L3Liver ENSG00000188976 34 56 45 55 42 ENSG00000187961 8 13 11 12 20 ENSG00000187583 0 1 0 0 2

samWrapper

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描述

此函数是 samr 中函数的包装器。它用于识别两组具有多个重复的样本或来自不同个体 (例如,疾病样本与对照样本) 的两组样本的差异表达基因。

用法

samWrapper( geneExpFile1, geneCol1=1, expCol1=2, measure1=rep(1, length(expCol1) ), geneExpFile2, geneCol2=1, expCol2=2, measure2=rep(2, length(expCol2) ), header=TRUE, sep="", paired=FALSE, s0=NULL, s0.perc=NULL, nperms=100, testStatistic= c("standard","wilcoxon"), max.qValue=1e-3, in.foldchange=logged2=FALSE, output )

参数

参数描述 geneExpFile1 包含组 1 的基因表达值的文件。 geneCol1 geneExpFile1 中的基因 ID 列。 expCol1 geneExpFile1 中的表达值列。参见示例。 measure1

numeric vector of outcome measurements for group1. like c(1,1,1...) when paired=FALSE, or like c(-1,-2,-3,...) when paired=TRUE.

geneExpFile2 包含组 2 的基因表达值的文件。 geneCol2 geneExpFile2 中的基因 ID 列。 ExpCol2 geneExpFile2 中的表达值列。参见示例。 Measure2 组 2 的结果测量数值向量。如果 paired=FALSE,则类似 c(2,2,2...),如果 paired=TRUE,则类似 c(1,2,3,...)。 header 一个逻辑值,指示 geneExpFile1 和 geneExpFile2 是否将其第一行作为变量名称。 sep 字段分隔符字符。如果 sep = "" (read.table 的默认值),则分隔符是空白,即一个或多个空格、制表符、换行符或回车符。 paired 一个逻辑值,指示样本是否配对。 s0 测试统计量分母的可交换性因子;默认是自动选择。 s0.perc 用于 s0 的标准偏差值的百分位数;默认是自动选择;-1 表示 s0=0 (不同于 s0.perc=0,表示 s0=标准偏差值的第零百分位数= sd 值的最小值。 Nperms 用于估计错误发现率的置换次数。 TestStatistic 在两类非配对情况下使用的测试统计量。 "standard" (t 统计量) 或 "wilcoxon" (双样本 Wilcoxon 或 Mann-Whitney 检验)。建议使用 "standard"。 max.qValue 所需的最大 q 值;应 <1。 min.foldchange 所需的最小倍数变化;应 >1。默认值为零,表示不应用倍数变化标准。 logged2 一个逻辑值,指示表达值是否为 log2。 output 输出文件。

示例

> geneExpFile <- system.file("data", "GeneExpExample1000.txt", + package = "DEGseq") > set.seed(100) > geneExpFile1 <- geneExpFile > geneExpFile2 <- geneExpFile > output <- file.path(tempdir(), "samWrapperOut.txt") > expCol1 = c(7, 9, 12, 15, 18) > expCol2 = c(8, 10, 11, 13, 16) > measure1 = c(-1, -2, -3, -4, -5) > measure2 = c(1, 2, 3, 4, 5) > samWrapper(geneExpFile1 = geneExpFile1, geneCol1 = 1, expCol1 = expCol1, measure1 = measure1, geneExpFile2 = geneExpFile2, geneCol2 = 1, expCol2 = expCol2, measure2 = measure2, nperms = 100, min.foldchange = 2, max.qValue = 1e-04, output = output, paired = TRUE)

参考文献

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Jiang,H. and Wong,W.H. (2009) Statistical inferences for isoform expression in RNASeq. Bioinformatics, 25, 1026–1032.

Likun Wang, Zhixing Feng, Xi Wang, Xiaowo Wang, and Xuegong Zhang. DEGseq: an R package for identifying differentially expressed genes from RNA-seq data Bioinformatics Advance Access published on October 24, 2009, DOI 10.1093/bioinformatics/btp612.

王立昆; 冯志兴; 王曦; 王晓沃; 张雪峰. DEGseq 手册. 清华大学. 北京, 中国. 2009(B). 可从 <http://www.bioconductor.org/packages/devel/bioc/manuals/DEGseq/man/DEGseq.pdf> 访问, 访问日期: 2009 年 11 月 18 日

王立昆; 王曦. 如何使用 Degseq 包. 清华大学自动化系/ TNLIST 生物信息学实验室和生物信息学部门. 北京, 中国. 2009(A). 可从 <http://bioinfo.au.tsinghua.edu.cn/software/degseq/DEGseq.pdf> 访问, 访问日期: 2009 年 11 月 18 日


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