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结构生物化学/蛋白质/纯化

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一般信息

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蛋白质纯化是分离蛋白质以进行单独分析的过程。蛋白质纯化是研究蛋白质的第二步,第一步是测定法。测定法是一种测量酶活性的方法,因此可以确认感兴趣的蛋白质的存在。常用的测定法包括蛋白质印迹ELISA(酶联免疫吸附测定)。在纯化过程之前,细胞破坏用于使细胞内容物均质化。细胞打开后,可以通过几种不同的方法从其他蛋白质和细胞器中纯化蛋白质。蛋白质混合物通常被多次分离,每次分离基于不同的特性,例如

  • 溶解度
  • 大小
  • 分子量
  • 电荷
  • 结合亲和力

纯化特定蛋白质的预期原因决定了蛋白质纯化的水平和程度。有时,仅中等程度纯化的蛋白质样本足以用于其预期应用;然而,其他情况需要更高程度的纯化,尤其是在基本目标是研究特定蛋白质的特性和趋势时。通过考虑溶解度、大小、分子量、电荷和结合亲和力,进行蛋白质纯化的科学家的目标是找到必要的纯化水平,并产生足够用于进一步研究和应用的蛋白质产量。这意味着使用最少的步骤来保持高产量,因为每个蛋白质纯化步骤都会造成一定程度的产品损失。因此,产量和纯化水平是蛋白质纯化的两个障碍因素。每个蛋白质纯化项目的最终目标分为两类:分析性(用于研究和科研目的)和制备性(用于生产和创建商业产品)。


有许多纯化方法,包括







蛋白质纯化方法
差速离心 盐析 凝胶过滤色谱 离子交换色谱 亲和色谱 疏水相互作用色谱 凝胶电泳 等电聚焦 二维电泳 透析
蛋白质根据质量或密度通过离心力分离。离心可以分离不同细胞区室中的蛋白质。 不同的蛋白质在不同的盐浓度下沉淀。当盐浓度增加时,更多的蛋白质能够分离大分子更快地流向柱的底部。 蛋白质根据其电荷分离。带正电荷的蛋白质结合到带负电荷的珠子上,而带负电荷的蛋白质被释放。带负电荷的蛋白质流速更快。 许多蛋白质对特定的化学基团具有很高的亲和力。 蛋白质根据疏水性水平的不同而分离。 电泳分离蛋白质,而凝胶增强分离。小蛋白质更快地穿过凝胶。 不同的蛋白质具有不同的pI(等电点)。蛋白质在水平方向上根据pI分离,在垂直方向上根据质量分离。 蛋白质通过半透膜分离。由于蛋白质的尺寸通常大于膜的孔径,因此蛋白质不会通过并分离。
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